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小鼠Treg檢測操作步驟

時間:2015/10/21閱讀:1790
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、在每個流式上樣管中加入00 μl準(zhǔn)備好的細胞懸液,細胞數(shù)約為x06個.

2、按照細胞表面抗原染色方法標(biāo)記表面抗原。根據(jù)說明書加入CD4和CD25抗體00 μl體系中使用0.25 μg FITC anti-mouse CD4,0.06 μg APC anti-mouse CD25抗體。根據(jù)這些試劑詳細的說明書操作。4 ℃孵育30 分鐘。孵育表面抗體之前加入Fc受體阻斷劑。 

3、用預(yù)冷流式染色緩沖溶液洗滌細胞(離心并轉(zhuǎn)移)。

4、旋渦震蕩重懸細胞后加入ml的固定/破膜工作液(Fixation/Permeabilization)(:3稀釋好),并再次旋渦混勻。

5、避光4℃孵育30分鐘到8小時(孵育30分鐘到8小時,結(jié)果一樣)。

6、加入2ml 破膜緩沖液(Permeabilization Buffer)(:9去離子水稀釋)離心洗滌細胞并棄去上清液。

7、重復(fù)第6步操作洗滌細胞。

8、(可選)加入含0.5 μg Fc受體阻斷劑的破膜緩沖液,保證00 μl體系4 ℃孵育5分鐘。

9、封閉液無需洗去,體系加入0.5 μg PE anti-mouse/rat Foxp3抗體和PE Rat lgG2a同型對照(用Permeabilization Buffer工作液進行稀釋),避光4℃孵育至少30分鐘。建議進行預(yù)實驗摸索出抗體的zui適濃度。

0、加入2ml破膜工作液離心洗滌細胞并棄去上清液。

、重復(fù)上一步洗滌細胞。

    用適量體積的Flow Cytometry Staining Buffer重懸細胞,并上機檢測并分析。注:由于染色過程中使用了細胞固定和破膜,對比起活細胞在形態(tài)上會有一定變化。

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