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凝膠過濾實驗方法

時間:2015-5-20閱讀:657
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1.凝膠的選擇

根據層析物質分子量的大小選擇不同型號的凝膠,如除鹽和除游離的熒光素,則可選用粗、中粒度的G25或G50,G250多用于分離蛋白質單體,G200多用于分離蛋白質凝膠聚合體等。

2.凝膠的預處理

稱取適量的凝膠加入過量的緩沖液在冰箱(或室溫)中充分膨脹,或在沸水中煮,膨脹時間應根據不同型號的凝膠而定。

凝膠量與型號和層析柱大小與規格及凝膠用量


層析柱規格 & @- q1 P( c' }* d 凝膠的規格和用量( g )
直徑( cm)高( cm)容量( ml ) & L) Q+ ^/ `" iG25 1 g. l% A5 @& s4 m" _0 ^* CG50 , k3 L) X! ?% Y- _. ?* A; fG100 0 K" k" G" q. ?: W+ ~  nG200
0.915 ; N7 d) E3 u$ |8 t, d6 b$ R( x7 H8 {9.52.5 10.6 ( c, i" m, x; i2 p$ I# C3 B0.3
0.930 / p5 J5 L+ x, [& r+ A! R" T19 " M! z+ a* E' R0 Q6 b5 j5 $21.20.6 '
0.960 2 e$ x7 x+ H: s, { 38 . U: R7 D- Q8 _ 104 $ V/ ?- `1 G" |( F, | 2.51.2
1.6 $ \6 T# E! b5 r. J6 ^9 y" n 20 40 10 . Y8 s- V7 V) N/ d 4 7 @) o3 u$ u" g$ y 2.5 + v, _1 z( R# {, V& Y) Y, N# j7 ~ 1.2
1.640 2 v2 G' J+ w$ {- O 80 208 9 X. k" q' }, L4 e; ?* n0 { 5.0 ( O# B$ D/ }2 F6 \) U! @ 2.4 7 Q! `# r/ Q) _7 H# \ 
1.6 70
35149.0 . m# H$ W4 D0 i7 | 4.4
1.6100 200 2 H. |- [% W5 S9 `& ] 50 20 12.56 ( O3 w. n+ J; y 
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為使粒子均勻一致需進行浮選,即加入凝膠粒子后,輕輕攪拌,靜置20min,傾去沉淀的粒子,如此反復數次即可。


3.裝柱

層析柱的選擇一般根據分離樣品的種類和樣品的數量而定。純化蛋白質時,柱床體積應為樣品體積的25~100倍。去鹽、游離熒光素約為樣品體積的4~10倍。柱太短,影響分離效果。柱長一些,分離效果好,但柱太長,則延長分離時間,樣品也稀釋過度。層析柱的內徑也要選擇適當。內徑過細,會發生“器壁效應",即靠近管壁的流速要大于中心的流速影響分離效果。所以層析柱的內徑和高度應有一定的比例。對于除鹽來說應為1:5~1:25;對于純化蛋白質來說應為1:20~1:100。

4.加樣與洗脫

樣品體積不宜過多,為床體積的1%~5%,zui多不要超過10%。樣品濃度也不宜過大,濃度過大粘度大,分離效果差,一般不超過4%。

洗脫液應與膨脹一致,否則更換溶劑,凝膠體積會發生變化,影響分離效果。洗脫液要有一定的離子強度和pH值。分離血清蛋白常用0.02~0.1Mol/LpH6.9~8.0的PBS液(0.14Mol/LNaCl)和0.1Mol/LpH8.0Tris-HCl緩沖鹽溶液(0.14Mol/LNaCl)。

5.洗脫液收集

利用自動分步收集器收集,并以20%磺基水楊酸測試,當蛋白液下來時,開始分管收集,至無蛋白液為止。

6.凝膠柱的重復使用與保存

當樣品的各組分全部洗脫下來之后,即可加入新的樣品,繼續使用。保存方法有三種:

(1)在液相中保存zui方便,即于凝膠懸液中加入防腐劑(如0.002%洗必泰)或高壓滅菌后4℃保存。此法至少可以保存半年以上。

(2)用完后,以水沖洗,然后用60%~70%酒精液沖洗,凝膠體積縮小,即在半收縮狀態下保存。

(3)不用者,以干燥狀態保存,即水洗凈后,用含乙醇的水洗,逐漸加大乙醇用量,zui后用95%的乙醇洗,可全部去水,再用乙烯去除乙醇,抽濾干,于60℃~80℃干燥后保存。加乙醇時,切忌一上來就用濃乙醇處理,以防結塊。

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