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膠原酶消化法——培養(yǎng)臍帶間充質(zhì)干細胞

2021-6-21  閱讀(543)

  人臍帶間充質(zhì)干細胞具有高度分化潛能,基因穩(wěn)定、不易突變,不會引起腫瘤;無需配型、無排異,廣泛應(yīng)用于疾病治療及抗衰老研究。目前,在美容行業(yè)及針對亞健康群體的應(yīng)用,也越來越引人注目。
 
  臍帶間充質(zhì)干細胞臍帶是由包膜、華通氏膠、臍靜脈、臍動脈臍構(gòu)成。臍帶間充質(zhì)干細胞存在于華通氏膠中。
 
  由于存在數(shù)量少,用膠原酶消化后獲取的細胞量很少。另外,一般的膠原酶消化法獲取細胞時,膠原酶對細胞的傷害較大,培養(yǎng)出來的細胞狀態(tài)差。
 
  貼塊方法培養(yǎng)人臍帶間充質(zhì)細胞是普遍采用的方法,但是,細胞從組織中爬出來的時間長(10-20天,甚至更長)。我們經(jīng)過不斷的摸索,找出一個用膠原酶消化獲取臍帶間充質(zhì)干細胞的方法。
 
  具體操作方法如下:
 
  ① 在剪斷連接嬰兒端和母親的臍帶后,立刻用臍帶夾夾住,防止內(nèi)部污染。裝入無菌袋(容器)中,送進實驗室。
 
  ② 在生物安全柜或超凈工作臺內(nèi),取出臍帶,連同臍帶夾用75%的酒精泡2min(50ml離心管或250px皿)。如果臍帶較長,無法裝入容器,可以把臍帶剪成250px左右,但是剪斷之前一定要用臍帶夾加好,防止酒精進入臍帶內(nèi)部,損傷細胞。
 
  ③ 用酒精處理完,迅速移入裝有PBS或生理鹽水的容器中浸泡清洗2次,每次2min即可。
 
  ④ 剪掉臍帶夾,把臍帶剪成2-75px段,用剪刀從臍靜脈內(nèi)側(cè)剖開臍帶,用帶齒鑷子(臍帶組織比較滑,用帶齒鑷子好操作)把臍靜脈、臍動脈以及臍帶包膜去除,防止雜細胞混入。
 
  ⑤ 用剪刀剪碎臍帶組織,0.1%Ⅱ型膠原酶(稀釋液用DMEM/F12)過夜消化,4℃過夜消化。
 
  ⑥ 第二天,把未消化完的組織倒到100目(80目、160目都可以)的鋼制篩網(wǎng)上(最好是鋼制網(wǎng)篩,承載的組織量大,便于操作),用PBS(或生理鹽水)多次沖洗,盡可能去掉附著在組織表面上的膠原酶。最后用*培養(yǎng)基沖洗1-2次,去除PBS(或生理鹽水)。
 
  ⑦ 倒入皿中(放入瓶中操作不方便),在未消化組織塊上加入少量培養(yǎng)基培養(yǎng)(6ml加2-3ml、10ml加3-4ml)(其目的是減少殘存膠原酶對細胞的傷害)。次日,組織塊*消失(被浸入到組織中的膠原酶消化掉了),細胞*被分散開,顯微鏡下可以看到已經(jīng)消化完的組織中有許多被分散的細胞。再加入少量培養(yǎng)基(150px加2-3ml、250px加4-5ml)加入培養(yǎng)基后繼續(xù)培養(yǎng)。
 
  ⑧ 兩天后繼續(xù)添加少量培養(yǎng)基(150px加2-3ml、250px加4-5ml)培養(yǎng)。
 
  ⑨ 一兩天后,細胞數(shù)量會有明顯增加(許多成集落生長),分別移入兩個50ml離心管中,加入PBS(或生理鹽水)至50ml,混勻,2500rpm、6min離心。
 
  ⑩ 用5-6ml(根據(jù)細胞量)*培養(yǎng)基重懸,1000rpm、6min離心,鋪到T25瓶中,加入5ml*培養(yǎng)基培養(yǎng)。
 
  ? 三天后,可以換液或添加3-4ml*培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)。之后每三天換液,直至長滿(70%以上即可傳代)
 
  啟示與注意事項:
 
  ① 此方法具有易于操作,培養(yǎng)時間短的特點。
 
  ② 用膠原酶消化臍帶,37℃下,數(shù)小時以內(nèi)基本能夠把臍帶消化完,但同時對細胞的傷害較大。膠原酶能夠浸透到臍帶組織內(nèi)部,低濃度的膠原酶從內(nèi)到外消化組織,對細胞傷害較小。(胰蛋白酶對臍帶組織消化效果非常差)
 
  ③ *消化完組織,并沒有單獨把細胞分離出來的原因,是臍帶膠原成分(粘稠)會促使臍帶間充質(zhì)干細胞增殖。多數(shù)細胞懸浮在膠原當中,以集落方式增殖,這是鋪到瓶中,細胞保持良好狀態(tài)的主要原因。
 
  ④ 培養(yǎng)臍帶間充質(zhì)干細胞時,不要用帶有血清的培養(yǎng)基(血清會促進細胞分化),而是用干細胞專用培養(yǎng)基。傳代也盡量不用胰蛋白酶消化(胰蛋白酶對臍帶間充質(zhì)干細胞傷害大),應(yīng)該采用專用消化液,能夠保證細胞更多的傳代次數(shù)。
 


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