腫瘤條件培養基制備：

1．取C3H小鼠的S-180實體肉瘤組織。

2．*消化，Dulbecco改良Eagle氏培養液15ml（含10％小牛血清），接種到T-75 Falcon產培養瓶中培養。

3．在細胞生長接近*匯合時，收集培養液制成條件培養基；再用含10％小牛血清的新培養液后，也每隔兩天收集一次，可獲得多量條件培養基。

4．4000轉/分離心后，再通過0.22μm微孔濾膜濾過，－20℃凍存備用（臨用前融解）。

初代培養：

1．取材：取新鮮牛腎上腺數個，先用Hanks液洗除血污。

2．剝除被膜，分離出皮質，切成1立方毫米小塊，加0.5％膠原酶室溫中消化1小時，每隔10分鐘用吸管吹打懸液令消化充分。

3．通過不銹鋼紗網濾過，網眼要求只允許能通過小于110微米長的毛細血管小段。

4．650rpm，4℃，離心7分鐘后，棄掉上清膠原酶。

5．沉淀物用培養液重懸并離心，再重懸，再離心，共兩次。

6．末次沉淀物仍用含有10％小牛血清的Dulbecco改良Eagle氏培養液重懸后，稍吹打。

7．接種于鋪有明膠底層的培養皿中，37℃培養，在培養頭1～3小時中，毛細血管小段和內皮細胞zui先帖附于底物上，而腎上腺細胞和成纖維細胞卻仍在培養液中漂浮。

8．趁此時，吸除培養液，再加入腫瘤條件培養液，每兩天換液一次。毛細血管小段一般成自1～4個內皮細胞，以后每個小段在底物上慢慢展成特殊形態的細胞島，能持續2～5天。

毛細血管內皮細胞分離培養：

1．初代培養2～3天后，鏡下確認幾個毛細血管內皮細胞島，在培養皿背面，用不脫色筆劃圈圈起。

2．鏡下檢查，如圈內殘有非內皮細胞時，可用顯微細針在倒置顯微鏡下挑除。此操作用細胞解剖器或用手操作均可，宜在凈化臺無菌氣流中、打開培養皿蓋進行，但時間不宜過長（15～20分鐘），圈內非內皮細胞可用無菌膠刮除。

3．用培養液漂洗兩次，以去除漂浮細胞。

4．剩余內皮細胞島如小（5～20個細胞）而少時，生長增值變得緩慢或不*不生長，此時需加入3T3等飼細胞，飼細胞接種量為4000細胞/cm2。

5．當內皮細胞充滿所有飼細胞空間后，用*消化、離心、加入腫瘤條件培養基。

6．接種入明膠底物皿中繼續培養（飼細胞死亡淘汰），細胞增殖生長匯合后，按1：5傳代。