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大提柱式植物RNAout

時間:2013/6/25閱讀:382
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大提柱式植物RNAout
產品及特點 本產品是天澤基因柱式植物RNAOUT(CAT#:71203)的大提升級產品,它結合了植物RNAOUT的性(其效果在近五十多種各類植物中得到驗證,植物名單見植物RNAOUT產品介紹的附錄)和天澤基因柱式純化系列產品的快捷性。該產品特點如下:
1. 樣品處理量大,一次可以處理5g的植物材料。
2. 操作簡單快速,處理一個樣品只需要約二十分鐘。
3. RNA純度更高,平均 OD260/280一般都在2.0左右,能夠有效去除大多數植物中的多糖污染。
4. 產量高(具體根據材料不同而不同)。
5. 得到的RNA可直接用于RT-PCR、Northern雜交、cDNA合成等實驗。
規格及成分 成 份 5次包裝
溶液A 100 mL
溶液B 30 mL
溶液C 100 mL
大提離心吸附柱 5套
通用洗柱液 100 mL
RNA洗脫液 5 mL
使用手冊 1份

運輸及保存 常溫運輸,4℃保存,有效期一年。
自備試劑 氯仿。
使用方法 1. 估算組織細胞的用量。每次大量提取一般需要3-5g植物葉片、或1-3g植物種子、或5-10g植物果實。
2. 先將新鮮植物*切成小塊(保存在RNALOCKER中的植物組織需用紙吸去RNALOCKER液體后再剪切成小塊),放入50mL塑料離心管中,加入20mL溶液A,然后用勻漿器勻漿。勻漿時會產生泡沫,但不影響提取效果。也可以使用液氮硯磨法破碎植物組織,但為避免氧化,硯磨時必須將組織浸泡在溶液A中進行,不能只在液氮中硯磨,然后再將硯磨物轉移至干凈的50 mL塑料離心管中。注意:溶解溶液A沉淀。溶液A在4℃放置后可能會產生沉淀,使用前必須放在65℃水浴使沉淀*溶解并充分搖勻后再取用。
3. 在離心管中加入5 mL的溶液B和5 mL自備氯仿,在振蕩器上充分振蕩1-3分鐘,此時溶液呈均勻的乳濁狀。振蕩器振蕩時必須使管底溶液震蕩起來。
4. 室溫12000-15000 g離心3-5分鐘,水相和有機相之間將有較厚的細胞破碎物。
5. 將上清液轉移到另一干凈的50mL塑料離心管中。下層有機相和中間層含有DNA、蛋白質和其他雜質,避免觸及或吸取。留下少量上清液不取。
6. 加入等體積的溶液C,充分顛倒混勻。
7. 將一半的溶液轉移到大提離心吸附柱中,13000-15000 g室溫離心3-5分鐘,棄穿透液。
8. 將剩下的一半溶液轉移到同一大提離心吸附柱中, 13000-15000 g室溫離心3-5分鐘,棄穿透液。
9. 加10 mL通用洗柱液,室溫離心3-5分鐘,棄穿透液。
10. 重復上步一次,加10 mL通用洗柱液,室溫離心3-5分鐘,棄穿透液。
11. 室溫離心1-3分鐘。此步十分重要,否則殘留的乙醇會影響RNA的使用。
12. 將大提離心吸附柱轉移到一個自備的RNase-free收集管中,加入0.5 mL RNA洗脫液,室溫放置1-2分鐘。
13. 13000-15000 g室溫離心半分鐘,離心管中溶液即為RNA樣品。
14. 再加入0.5 mL RNA洗脫液,重復上面兩步一次。
15. 將兩次洗脫得到的RNA立即使用或存放于-80℃待用
16. RNA完整性的電泳檢測:如果需要做Northern雜交,強烈建議用戶使用甲醛變性膠進行RNA電泳,因為非變性膠不能分離所有的RNA分子(BioTechniques,28:414,2000)。
17. RNA產量產率測定:將5-10 μL RNA溶于TE緩沖液中(pH7.5-8.2之間)檢測其在OD260的光吸收。通過光吸收可以得出RNA濃度(1 OD260的RNA=40 μg/mL),進而計算出RNA的產量(濃度X體積)和產率(RNA產量/組織用量)。
18. RNA純度測定:無污染的總RNA的OD260/OD280一般在1.8-2.1之間(具體數值與其堿基組成和溶液成分等多種因素有關),高于此范圍則分別表示樣品可能有蛋白質污染,但一般不影響RT-PCR等反應。
 

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