一、骨髓瘤細胞的制備

1．骨髓瘤細胞特征骨髓瘤細胞系和免疫動物應屬同一品系，這樣雜交瘤融合率高，也便于接種雜交瘤細胞在同一品系小鼠腹腔內產生大量McAb。常用骨髓瘤細胞系有：SP一2／0、NS1、X63、Ag8．653等，本章以SP一2／0為例。骨髓瘤細胞是經過8一氮*(8一azaguanine，8-AG)、5一溴脫氧尿苷(5一brom-2-deoxy uridine，5一BrdU)或6一巰*(6一thioguanine，6一TG)篩選而得到的遺傳基因缺陷型的細胞系，骨髓瘤細胞缺乏次黃嘌呤一*磷酸核糖轉移酶(hypoxanthine guanine phosphcnbosyl transferase，HGPRT)或胸腺嘧啶核苷激酶(tlaymidine Kinase，TK)。因此，當骨髓瘤細胞主要合成途徑被氨基蝶呤(aminopterin)阻斷，由于其缺乏上述兩種酶，從而導致骨髓瘤細胞在HAT次黃嘌呤(H)、氨基蝶呤(A)、胸腺嘧啶(T)培養系統中的死亡。

    一般在融合前2周就應開始復蘇骨髓瘤細胞，生長良好的細胞在倒置顯微鏡下觀察為圓形明亮、排列整齊、形態完整、濃度適宜(zui大密度不得超過106個／ml)。一般擴大培養以l：10稀釋傳代．每3～5d傳代一次。實驗室培養的骨髓瘤細胞每3～6個月應用8一AG篩選一次，以除去HGPRT回復突變的細胞。

2．骨髓瘤細胞懸液的制備方法

1)于融合前36～48h，將骨髓瘤細胞擴大培養(一般按一塊96孔板的融合試驗約需2～3瓶100ml培養瓶培養的細胞進行準備)。

2)融合當天，用彎頭滴管將細胞從瓶壁輕輕吹下，收集于50ml離心管或融合管內。

3)1000r／min離心5～10min，棄去上清液。

4)加入30ml不*培養基，同法離心洗滌一次。然后將細胞重懸浮于10ml不*培養基，混勻。

5)取骨髓瘤細胞懸液，加0．4％臺盼藍染液做活細胞計數后備用。

二、免疫脾細胞的制備

    免疫脾細胞指的是處于免疫狀態的脾臟中B淋巴母細胞一漿母細胞。一般取zui后一次加強免疫3d以后的脾臟，制備成細胞懸液，由于此時B淋巴母細胞比例較大，融合的成功率較高。脾細胞懸液的制備：在無菌條件下取出脾臟，用不*培養液洗一次，置平皿中不銹鋼篩網上，用注射器針芯研磨成細胞懸液后計數。一般免疫后脾臟體積約是正常鼠脾臟體積的2倍，細胞數為2×lO4左右。

三、飼養細胞的制備

    在細胞融合后選擇性培養過程中，由于大量骨髓瘤細胞和脾細胞相繼死亡，此時單個或少數分散的雜交瘤細胞多半不易存活，通常必須加入其他活細胞使之繁殖，這種被加人的活細胞稱為飼養細胞。常用的飼養細胞有：小鼠腹腔巨噬細胞、小鼠脾臟細胞或胸腺細胞等。取與免疫小鼠相同品系的6～10周齡小鼠，頸椎脫臼處死，腹腔內無菌注射10～15ml*培養液，拇指輕揉腹部數次后慢慢抽回液體，1000r／min離心5～10min．棄上清液。加人HAT培養基，調整細胞濃度為2×105／ml，加入96孔板，100gl／孔，放人37℃5％CO2的培養箱中培養。一般飼養細胞在融合前1～2d制備，一只小鼠可取lO7個巨噬細胞。

四、細胞融合與雜交瘤細胞的選擇性培養

1.取對數生長的骨髓瘤細胞，1000r／min離心5min，棄上清液．用不*培養液混懸細胞后計數，取所需的細胞數，用不*培養液洗滌2次。

2．同時制備免疫脾細胞懸液，用不*培養液洗滌2次。

3．將骨髓瘤細胞與脾細胞按1：(5～10)的比例混合，加入不*培養液，1200r min離心8min，棄上清液。在手掌上輕擊融合管底，使沉淀細胞松散均勻，置37℃水浴中預熱。

4．吸取37℃預熱的PEG(pH 8．O)1ml，緩緩滴人離心管，1min內加完。

5．滴加37℃預熱的不*培養基1ml，lmin內加完，然后加*培養基至50ml．終止PEG的作用。

6．1000r／min離心5min，棄去上清液。將沉淀細胞輕輕懸浮于所需容積的HAT培養基中，接種24孔板或96孔板，置37℃，5％CO2培養箱內培養。

7．5d后用HAT培養基換出1／2培養基。

8．7～10d后用HT培養基換出HAT培養基，第14d后可用普通*培養基。

9．經常觀察雜交瘤細胞生長情況，待其長至7L底面積1／10以上時吸出上清液供抗體檢測。