蛋白胨細胞培養基冷凍保存及神經膠質細胞培養的步驟

    培養蛋白胨細胞時為防止以下問題，細胞將做冷凍保存：*、株化細胞產生性狀轉變。第二、污染。第三、株化細胞之增殖或生理特性有特定之限制，只能在一定的代數范圍內進行增殖培養或進行特定實驗。目前可能解決這些困難的方法其中之一是細胞冷凍保存法，將冷凍細胞儲于冷凍管中，將其中一部分拿出來做一些必要的檢查，其它的冷凍細胞則在需要時拿出來解凍，用來進行實驗。本方法亦可節省繼代培養時所花費的勞力、物力，并可防止培養中經常發生意外事故，喪失細胞珠。因此冷凍保存法為細胞培養研究上之基本技術之一。

　　1、準備2 x 107cells/ml的細胞懸浮液。

　　2、冷凍用培養基(2倍)：以微溫水溶解DMSO，在培養基中混合為15% (v/v)。這是DMSO的二倍濃度之溶液。必須在進行實驗前在行配制，配好后放在冰箱中，使用量必須和細胞懸浮液的量相等；使用時維持在4℃。

　　3、分裝：在冷凍管管中分別加0.5ml (1/2冷凍管體積)冷凍用培養基(2倍)及2 x 10(7次方)cells/ml的細胞懸浮液；等量混合。將蓋子扭緊后，在管中部貼上膠帶密封。

　　4、記載卷標：用抗凍marker pen在冷凍管上寫明細胞名稱、代數、冷凍的年，月，日等所需要的項目。

　　5、放進冷卻的保利龍容器中，而在- 80℃的超低溫槽中放置一個晚上。

　　6、放進液態氮容器中及保存：在支持棒上裝上冷凍管，迅速地放進容器內。

    蛋白胨神經細胞（神經元〕不易培養，只有在適宜情況下，如接種在膠原底層上，或加入神經生長因子和膠質細胞因子時，可出現一定程度的分化，長出突起等現象，但很難使之增值。而神經膠質細胞是神經組織中比較容易培養的成分。

　　人、鼠等腦組織即可用于神經膠質細胞培養，不僅能獲得生長的膠質細胞，也可形成能傳代的二倍體細胞系。一般說來，膠質細胞在培養中生長不穩定，不易自發轉化，但對外界因素仍保持很好的敏感性，可用ROUS病毒和SV4等誘發轉化。

　　蛋白胨神經膠質細胞培養方法如下：

　　1、從手術室無菌取腦髓灰質或白質后，仔細剝除腦膜、血管和纖維成分，置Hanks液中漂洗一、二次。

　　2、置于30—50倍體積的Hanks液中，此時腦組織比較柔軟，反復吹打即制成細胞懸液。

　　3、把懸液注入離心管室溫中直立5—10分鐘后，細胞或細胞團快自然下沉，脂肪等雜物易漂浮，可吸除上層、反復二、三次，即可排除脂肪成分和其它碎塊并獲較多細胞成分。

　　4、在沉降物中加入適量培養液，通過紗網成紗布過濾，計數并調整細胞密度。

　　5、接入培養瓶或皿中，置5%CO2溫箱中培養。

　　該細胞適應環境過程較長，接種后貼壁較慢。貼壁后短期內也可能不見細胞分裂現象，然而一旦生長后即能迅速進入旺盛的增殖狀態。細胞傳代可以0.25%*消化處理。